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      懸浮細胞培養的標準化操作流程

      更新時間:2025-09-11  |  點擊率:509

        懸浮細胞培養的正確方法

        以下是懸浮細胞培養的標準化操作流程及關鍵注意事項,天正信達結合多個可靠來源整理:

        一、培養前準備?

        器材選擇?

        推薦使用T25培養瓶或10cm培養皿(初期擴增),后期可轉至通氣旋轉瓶?。

        確保容器無菌,避免使用未處理玻璃器皿(易導致細胞團聚)?。

        培養基與血清?

        選擇適配細胞類型的培養基(如DMEM高糖用于293T細胞)?。

        胎牛血清濃度建議5-20%,質量差會導致細胞漂浮死亡?。

        二、標準化操作流程?

        細胞接種?

        密度控制?:初始接種30-50萬細胞/mL,避免低密度生長停滯?。

        操作要點?:輕柔混勻細胞懸液,避免氣泡產生?。

        培養條件?

        溫度37℃、5% CO?(部分細胞需無CO?環境)?。

        避免頻繁開箱觀察,每日檢查1次即可?。

        傳代與換液?

        傳代時機?:密度達80-100萬細胞/mL時傳代?。

        方法?:

        半換液法?:靜置5分鐘后吸取一半上清,補加等量新鮮培養基?。

        不離心傳代?:直接均分細胞懸液至新容器(減少機械損傷)?。

        三、關鍵注意事項?

        細胞狀態監測?

        健康標志?:圓形/卵圓形、邊緣光滑、均勻懸浮?。

        異常信號?:發灰/發暗、大量團聚或沉淀(可能污染或老化)?。

        污染與質量控制?

        定期檢測支原體(污染會導致細胞漂浮)?。

        避免使用含鈣鎂離子的緩沖液(易致細胞成簇)?。

        機械損傷預防?

        減少離心頻率(敏感細胞可每周1次)?。

        吹打時避免過度分散細胞團(小團塊無需吹散)?。

        四、常見問題處理?

        細胞漂浮?

        可能原因:血清質量差、污染、密度過高?。

        解決方案:更換優質血清、檢測污染、調整密度?。

        生長緩慢?

        可能原因:接種密度低、培養基成分耗盡?。

        解決方案:提高初始密度、補加谷氨酰胺?。

        注:以上僅供參考,不作為實際數據,實驗需嚴格遵循說明或咨詢技術老師。 胎牛血清

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