懸浮細胞培養的正確方法
以下是懸浮細胞培養的標準化操作流程及關鍵注意事項,天正信達結合多個可靠來源整理:
一、培養前準備?
器材選擇?
推薦使用T25培養瓶或10cm培養皿(初期擴增),后期可轉至通氣旋轉瓶?。
確保容器無菌,避免使用未處理玻璃器皿(易導致細胞團聚)?。
培養基與血清?
選擇適配細胞類型的培養基(如DMEM高糖用于293T細胞)?。
胎牛血清濃度建議5-20%,質量差會導致細胞漂浮死亡?。
二、標準化操作流程?
細胞接種?
密度控制?:初始接種30-50萬細胞/mL,避免低密度生長停滯?。
操作要點?:輕柔混勻細胞懸液,避免氣泡產生?。
培養條件?
溫度37℃、5% CO?(部分細胞需無CO?環境)?。
避免頻繁開箱觀察,每日檢查1次即可?。
傳代與換液?
傳代時機?:密度達80-100萬細胞/mL時傳代?。
方法?:
半換液法?:靜置5分鐘后吸取一半上清,補加等量新鮮培養基?。
不離心傳代?:直接均分細胞懸液至新容器(減少機械損傷)?。
三、關鍵注意事項?
細胞狀態監測?
健康標志?:圓形/卵圓形、邊緣光滑、均勻懸浮?。
異常信號?:發灰/發暗、大量團聚或沉淀(可能污染或老化)?。
污染與質量控制?
定期檢測支原體(污染會導致細胞漂浮)?。
避免使用含鈣鎂離子的緩沖液(易致細胞成簇)?。
機械損傷預防?
減少離心頻率(敏感細胞可每周1次)?。
吹打時避免過度分散細胞團(小團塊無需吹散)?。
四、常見問題處理?
細胞漂浮?
可能原因:血清質量差、污染、密度過高?。
解決方案:更換優質血清、檢測污染、調整密度?。
生長緩慢?
可能原因:接種密度低、培養基成分耗盡?。
解決方案:提高初始密度、補加谷氨酰胺?。
注:以上僅供參考,不作為實際數據,實驗需嚴格遵循說明或咨詢技術老師。 胎牛血清
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